Primjeri korištenja Флюоресценции na Ruski i njihovi prijevodi na Engleskom
{-}
-
Official
-
Colloquial
Использование флюоресценции.
Максимум флюоресценции наблюдался при 670 нм.
Регистрировали временны′ е серии изображений поля флюоресценции OGB1.
Максимум флюоресценции в диапазоне 480- 600 нм.
Количественный химический анализ по спектрам флюоресценции и поглощения.
Максимум флюоресценции тиофлавина приходится на 534 нм.
Для этого измеряли зависимость флюоресценции от концентрации триптофана.
Зависимость флюоресценции от времени обработки представлена на рис.
Микровязкость в области липид- липидных и белок- липидных контактов анализировали по флюоресценции пирена.
Интенсивность флюоресценции косвенно свидетельствует о концентрации ФС в опухоли.
Фокусы опухоли выделены пунк тиром,точки А и В соответствуют курсорам измерения интенсивности флюоресценции.
Измерения спектров флюоресценции выполняли на спектрофотометре« ФЛЮОРАТ- 02 ПАНОРАМА».
Особое внимание уделяется клинически не измененным участкам слизистой оболочки, имеющим гашение флюоресценции.
Анализ параметров флюоресценции ФС проводили с помощью системы« Флуовизор» ООО« Аткус», Россия.
Учитывали число циклов, необходимое для амплификации праймера до того количества,которое давало реакцию флюоресценции.
Регистрацию флюоресценции проводили с помощью лазерного сканирующего микроскопа LSM 510 NLO Carl Zeiss, Германия.
Все авторы связывают высокую интенсивность флюоресценции НАДН с активными метаболическими процессами в опухолевых клетках.
Комбинация флюоресценции и конфокальных систем позволила проводить 3D- визуализацию клеток и тканей 6.
Прямое сравнение возможностей методов, основанных на биолюминесценции и флюоресценции, для визуализации in vivo до сих пор не проводилось.
Измерения спектров флюоресценции проводили на спектрофотометре« ФЛЮОРАТ- 02 ПАНОРАМА»« Люмэкс», Россия.
Также анализировали записи функции F( t) средней интенсивности флюоресценции OGB1 выделенной области поля от времени.
Для детекции флюоресценции использовали конфокальный лазерно- сканирующий микроскоп LSM 510; Carl Zeiss, Германия.
Уровень окислительных процессов определяли по флюоресценции битирозина, триптофана, гликозилированных белков и процессам перекисного окисления липидов.
Спектры флюоресценции мембранных зондов регистрировали с помощью спектрофлюориметра« Флюорат- 02- Панорама»« Люмекс», Россия.
Количественный анализ уровня сигнала флюоресценции в образцах тканей позволил выявить зависимость накопления наноконъюгата от введенной дозы препарата.
Взаимодействие различных лекарственных препаратов с одноклеточными биосенсорами- вегетативными игенеративными( пыльца) микроспорами проанализировано по их флюоресценции.
Уровень сигнала флюоресценции I фл образцов тканей у контрольных животных и животных с введением различных доз наноконъюгата.
С помощью программного обеспечения микроскопа из полученногоспектрального изображения выделяли канал, соответствующий принимаемому сигналу флюоресценции в диапазоне 650- 693 нм.
Кинетика затухания флюоресценции измеряется после возбуждения образца коротко- импульсным лазерным излучением фемто- или пикосекундным.
Созревание ДК- ЦТК также ведет к появлению CXCR5+ клеток, ноэти клетки имеют малое количество рецепторов CXCR5 на мембране, что проявляется в слабом приросте флюоресценции.