Voorbeelden van het gebruik van El software imagej in het Spaans en hun vertalingen in het Nederlands
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Colloquial
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Official
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Medicine
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Financial
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Ecclesiastic
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Ecclesiastic
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Official/political
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Computer
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Programming
Abra las imágenes con el software ImageJ.
Utilice el software ImageJ para medir las áreas de supervivencia y necrosis.
Abra un archivo de imagen con el software ImageJ.
Utilice el software ImageJ para procesar imágenes raw desde el microscopio(Tabla de materiales).
Estas mediciones se realizaron utilizando el software ImageJ(NIH).
Abra el software ImageJ, seleccione la imagen TEM relevante a través del menú"archivo" y"abierta" de la imagen.
Abrir una imagen de un pozo en el software ImageJ:"Archivo"→"Open".
Utilice el software ImageJ para seleccionar un área(en píxeles) que contiene sólo el DLMs(figura 5A/5B).
Elegans tratados con DMSO o etopósido en cada momento utilizando el software ImageJ. .
Siga el camino→ Herramientas→ Analizar gerente ROI en el software ImageJ para opluma una ventana del gestor ROI.
Fotografía las rebanadas y calcular el área en riesgo(AAR),la zona no isquémica y la zona del infarto utilizando el software ImageJ.
Abrir una imagen de todo bien en el software ImageJ(para este análisis, imágenes de uso del apartado anterior).
Tamaño de los osteoclastos se analizó usando el software ImageJ(figura 2).
Cargar cada imagen en el software ImageJ y medir la intensidad del pixel media seleccionando Analyzegt; medida de la imagen activa.
Utilice la función"Proyecto Z" en el software ImageJ 22 para obtener las imágenes presentido aquí por proyecciones de máxima intensidad en 2D.
Estos gráficos de barras representan los niveles de proteína comocuantificada por un análisis de densitometría de Western blot usando el software ImageJ. .
Estas imágenes se pueden importar en el software ImageJ para cuantificación y análisis de la intensidad del pixel a lo largo de un eje designado.
NOTA: Para analizar laserie de imágenes de una célula de la hinchazón,use el'Explorador de imágenes'y'plugins Protoplasto Analyzer'en el software ImageJ(escrito por Xavier Draye) 14.
Realizar análisis de imágenes con el software ImageJ abierta equipada con el plugin Utilidad ND que permite la importación de imágenes en el formato nativo ND2.
Imágenes de toracico completo se tomaron 10 X y área del músculo se cuantificó por binarizing imágenes(de dimensiones iguales) y cuantificar el porcentaje de píxeles correspondiente a tejido muscular(pixeles negros)de total, con el software ImageJ.
Utilice el software ImageJ para analizar las imágenes de vídeo de la transmitancia Indicador de tinte para obtener un transcurso de tiempo promedio de la transmitancia de cambio.
Toma una serie de cuatro diapositivas cerebro seccionado por microscopio digital y quantify el volumen del infarto como la relación de la zona infartada(área blanca en el lado derecho) a la zona de la intacto,hemisferio contralateral usando el software ImageJ. .
Analizar las imágenes utilizando el software ImageJ para medición del tamaño de agregados de la GC y la relación de intensidad de fluorescencia(FIR) de vivo a muerto la coloración en cada agregado.
Para analizar la anatomía de los vasos cerebrales, las imágenes de la superficie dorsal del cerebro o bien teñidas con colores látex oCB1 CB2+ tintas pueden ser analizados con el software ImageJ(a Java basada en software de dominio público utilizado para el procesamiento de imágenes y análisis).
Con el tiempo transcurrido fotografía de vídeo y el ordenador el software ImageJ, el rastreo de neutrófilos intraluminal en el endotelio,la migración de neutrófilos y transendotelial la migración y la quimiotaxis de los tejidos se visualizan y seguimiento.
Imágenes bidimensionales de nlsGPS1(A) y(C)nlsGPS1-NR raíces fueron analizados utilizando el software ImageJ e imágenes tridimensionales de nlsGPS1(B) y(D) nlsGPS1-NR se analizaron mediante un comercial tridimensional software de análisis de imagen.
Utilice el plugin'CMU 1394 Camera Driver' del software ImageJ(ver la Tabla de materiales específicos para las direcciones de descarga de estas dos piezas de software) para grabar una película de vídeo de 60 segundos de protoplastos inmóviles seleccionados(presumiblemente, los atrapados en el fondo) a una velocidad de 1 image/ seg(1 Hz).
Imágenes bidimensionales de nlsGPS1(E)y el hipocotilo de oscuro crecido nlsGPS1-NR(G) se analizaron utilizando el software ImageJ e imágenes tridimensionales de nlsGPS1(F) y(H) nlsGPS1-NR se analizaron mediante la software de análisis de imagen tridimensional comercial.
Anteriormente, las SG se analizaron utilizando el software gratuito ImageJ, que requiere la identificación manual de cada SG 4.